食品檢樣經過處理，在一定條件下培養后（如培養基成分、培養溫度和時間、pH、需氧性質等），所得1mL（或1g）檢樣中形成菌落的總數。

按國家標準方法規定，即在需氧情況下，37℃培養48h，能在平板計數瓊脂平板上生長的細菌菌落總數，所以厭氧或微需氧菌、有特殊營養要求的以及非嗜中溫的細菌，由于現有條件不能滿足其生理需求，故難以繁殖生長。因此菌落總數并不表示實際中的所有細菌總數，菌落總數并不能區分其中細菌的種類，所以有時被稱為雜菌數，需氧菌數等。

細菌總數指一定數量或面積的食品樣品．經過適當的處理后，在顯微鏡下對細菌進行直接計數。其中包括各種活菌數和尚未消失的死菌數。細菌總數也稱細菌直接顯微鏡數。通常以1g或1mL或1cm²樣品中的細菌總數來表示。

1、食品中細菌數量可反映該食品被污染的程度 

新鮮的食品內部一般是沒有或很少有細菌的，但由于外界污染情況不同，食品被細菌污染的多少就有所不同。食品中細菌數量越多，說明被污染的程度就越嚴重，越不新鮮，對人體健康威脅越大。相反，食品中菌數越少，說明該食品被污染的程度越輕，食品衛生質量越好，對人體健康影響也越小。 

2、食品中細菌數量可預測食品耐放程度和時間 

一般講，細菌數越少，食品耐放時間越長；相反，食品耐放時間就越短，例如用0℃保存牛肉，菌落總數為l0³CFU/cm²時，可保存18天，而當菌落總數增至l0⁵CFU/cm²時則只能保存7天。另外，用0℃保存魚時，菌落總數為l0⁵CFU/cm²時可保存6天。而菌落總數在l0³CFU/cm²時則可保存12天。 

3、食品中細菌數量可估測出食品腐敗狀況 

一般認為日常食品的活菌數為l0⁴～l0⁷CFU/g。而當活菌數達到l0⁸CFU/g則可認為處于初期腐敗階段。例如，活的家禽，皮膚表面的細菌數可低到1.5×l0³CFU/cm²。而加工后馬上檢測可達3.5×l0⁴CFU/cm²。當菌落數為l0⁷CFU/cm²時表示確已經腐敗，雞肉的細菌數達l0⁸CFU/cm²時可有氣味并變粘。

一般講，食品中細菌數量越多，則會加速腐敗變質過程的進程，甚至可能引起食用者的不良反應。

菌落總數檢測方法

菌落總數的常規檢驗方法菌落總數的常規檢驗方法(GB4789.2-2022)。

基本操作一般包括：樣品的稀釋——傾注平皿——培養48（72）小時——計數報告。

1、操作方法

（1）以無菌操作取檢樣25g（或25mL)，放于225mL無菌生理鹽水或其他無菌緩沖溶液的無菌錐形瓶（瓶內預置適當數量的玻璃珠)或無菌均質袋內，經充分振要或研磨制成1：10的均勻稀釋液。

固體檢樣在加入稀釋液后，最好置滅菌均質器中以8000~10000r/min的速度處理1～2min，制成1:10的均勻稀釋液。

（2）用1ml滅菌吸管或吸頭吸取1:10稀釋液1mL，沿管壁徐徐注入含有9mL滅菌生理鹽水或其他稀釋液的無菌試管內，振搖試管混合均勻，制成1:100的稀釋液。

（3）另取1mL滅菌吸管或吸頭，按上項操作順序，制10倍遞增稀釋液，如此每遞增稀釋一次即換用1支1mL滅菌吸管。

2、無菌操作

操作中必須有“無菌操作”的概念，所用玻璃器皿必須是完全滅菌的。所用剪刀、鑷子等器具也必須進行消毒處理。樣品如果有包裝，應用75%乙醇在包裝開口處擦拭后取樣。

操作應當在超凈工作臺或經過消毒處理的無菌室進行。瓊脂平板在工作臺暴露15分鐘，每個平板不得超過5個菌落（具體的自己根據實際制定實驗室的SOP）。

3、采樣的代表性

如系固體樣品，取樣時不應集中一點，宜多采幾個部位。固體樣品必須經過均質或研磨，液體樣品須經過振搖，以獲得均勻稀釋液。

4、稀釋液

樣品稀釋液主要是滅菌生理鹽水，有的采用磷酸鹽緩沖液（或0.1％蛋白胨水），后者對食品已受損傷的細菌細胞有一定的保護作用。如對含鹽量較高的食品（如醬油）進行稀釋，可以采用滅菌蒸餾水。

1、操作方法

（1）根據標準要求或對污染情況的估計，選擇1～3個適宜稀釋度，分別在制10倍遞增稀釋的同時，以吸取該稀釋度的吸管移取1mL稀釋液于滅菌平皿中，每個稀釋度做兩個平皿。

（2）將涼至46℃～50℃平板計數瓊脂培養基注入平皿約15～20mL，并轉動平皿，混合均勻。同時將平板計數瓊脂培養基傾入加有1mL稀釋液（不含樣品）的滅菌平皿內作空白對照。

（3）待瓊脂凝固后，翻轉平板，置36±1℃溫箱內培養48±2h，取出計算平板內菌落數目，乘以稀釋倍數，即得每克（每毫升）樣品所含菌落總數。 

（4）傾注用培養基應在48℃±2℃水浴內保溫，溫度過高會影響細菌生長，過低瓊脂易于凝因而不能與菌液充分混勻。如無水浴，也可以以皮膚感受較熱而不燙為宜。

傾注培養基的量規定不一，從12～20mL不等，一般以15mL較為適宜，平板過厚可影響觀察，太薄又易于干裂。傾注時，培基底部如有沉淀物，應將底部棄去，以免與菌落混淆而影響計數觀察

（5）為使菌落能在平板上均勻分布，檢液加入平皿后，應盡快傾注培養基并旋轉混勻，可正反兩個方向旋轉，檢樣從開始稀釋到傾注最后一個平皿所用時間不宜超過20min，以防止細菌有所死亡或繁殖。

（6）一般適溫較低，故多采用36℃，培養時間一般為48h。培養箱應保持一定的濕度，瓊脂平板培養48h后，培養基失重不應超過15％。

（7）為了避免食品中的微小顆�；蚺嗷�中的雜質與細菌菌落發生混淆，不易分辨，可同時作一稀釋液與瓊脂培養基混合的平板，不經培養，而于4℃環境中放置，以便計數時作對照觀察。

在某些時候，為了防止食品顆粒與菌落混淆不清，可在營養瓊脂中加入氯化三苯四氮唑（TTC），培養后菌落呈紅色，易于分別。

培養到時間后，計數每個平板上的菌落數�？捎萌庋塾^察，必要時用放大鏡檢查，以防遺漏。在記下各平板的菌落總數后，求出同稀釋度的各平板平均菌落數，計算出原始樣品中每克（或每mL）中的菌落數，進行報告。

2、計數

到達規定培養時間，應立即計數。如果不能立即計數，應將平板放置于0－4℃，但不得超過24h。

3、稀釋度選擇及菌落數報告方式

（1）若只有一個稀釋度平板上的菌落數在適宜計數范圍內，計算兩個平板菌落數的平均值，再將平均值乘以相應稀釋倍數，作為每克（或毫升）中菌落總數結果。

（2）若有兩個連續稀釋度的平板菌落數在適宜計數范圍內時，按式（l）計算：

N=∑C/（n1+0.1n2）d……………………（1）

式中：
N―樣品中菌落數；
∑C―平板（含適宜范圍菌落數的平板）菌落數之和；
n 1―第一個適宜稀釋度接種平板個數
n2―第二個適宜稀釋度接種平板個數；
d―稀釋因子（第一稀釋度）。

（3）若所有稀釋度的平板上菌落數均大于300，則對稀釋度最高的平板進行計數，其他平板可記錄為多不可計，結果按平均菌落數乘以最高稀釋倍數計算。

（4）若所有稀釋度的平板菌落數均小于30，則應按稀釋度最低的平均菌落數乘以稀釋倍數計算。

（5）若所有稀釋度（包括液體樣品原液）平板均無菌落生長，則以小于1乘以最低稀釋倍數計算。

（6）若所有稀釋度的平板菌落數均不在30~300之間，其中一部分小于30或大于300時，則以最接近30或300的平均菌落數乘以稀釋倍數計算。

4、菌落總數的報告
（1）菌落數在100以內時，按“四舍五人”原則修約，采用兩位有效數字報告。 

（2）大于或等于100時，第三位數字采用“四舍五人”原則修約后，取前兩位數字，后面用0代替位數；也可用10的指數形式來表示，按“四舍五入”原則修約后，采用兩位有效數字。

（3）若空白對照上有菌落生長，則此次檢測結果無效。

（4）稱重取樣以CFU/g為單位報告，體積取樣以CFU/mL 為單位報告。

1、不同稀釋度的菌落數應與稀釋倍數成反比（同一稀釋度的二個平板的菌落數應基本接近），即稀釋倍數愈高菌落數愈少，稀釋倍數愈低菌落數愈多。如出現逆反現象，則應視為檢驗中的差錯（有的食品有時可能出現逆反現象，如酸性飲料等），不應作為檢樣計數報告的依據。

2、當平板上有鏈狀菌落生長時，如呈鏈狀生長的菌落之間無任何明顯界限，則應作為一個菌落計，如存在有幾條不同來源的鏈，則每條鏈均應按一個菌落計算，不要把鏈上生長的每一個菌落分開計數。如有片狀菌落生長，該平板一般不宜采用，如片狀菌落不到平板一半，而另一半又分布均勻，則可以半個平板的菌落數乘2代表全平板的菌落數。

3、當計數平板內的菌落數過多（即所有稀釋度均大于300時），但分布很均勻，可取平板的一半或1/4計數。再乘以相應稀釋倍數作為該平板的菌落數。