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【學習筆記】GB 5749生活飲用水微生物指標——菌落總數解讀

放大字體  縮小字體 發布日期:2024-02-26
核心提示: GB 5749-2022生活飲用水指標解讀  微生物指標 GB 5749-2022 規定的常規檢驗微生物指標共3項,總大腸菌群、大腸埃
 GB 5749-2022
生活飲用水
指標解讀  微生物指標

 

GB 5749-2022 規定的常規檢驗微生物指標共3項,總大腸菌群、大腸埃希氏菌、菌落總數。

其中水中菌落總數可作為評價水質清潔程度和考核凈化效果

大腸菌群指示水體是否存在腸道傳染病的可能性

總大腸菌群主要包括4個菌屬:埃希氏菌屬、檸檬酸菌屬、克雷伯菌屬、腸桿菌屬這些菌屬可以在人、畜糞便中檢出,有的也可以在營養豐富的水體中檢出,即在非糞便污染的情況下,也有檢出這些細菌的可能性。耐熱大腸菌群和總大腸菌群組成相同,但主要組成是埃希菌屬,在此菌屬中與人類生活密切相關的僅有一個種,即大腸埃希氏菌。檸檬酸菌屬、克雷伯菌屬和腸桿菌屬所占數量較少。作為糞便污染的指示菌大腸埃希氏菌檢出的意義最大,其次是糞大腸菌群,總大腸菌群的衛生學意義稍遜一些。

PART.1

檢測依據





GB/T 5750.2-2023《生活飲用水標準檢驗方法 第2部分:水樣的采集與保存》

GB/T 5750.12-2023《生活飲用水標準檢驗方法 第12部分:微生物指標》 

PART.2

水樣采集





一、采樣容器

潔凈磨口硬質玻璃瓶;潔凈聚乙烯瓶(桶或袋);也可以使用符合要求的一次性采樣袋或采樣瓶。

 

二、采樣容器的洗滌

  1. 容器洗滌:將容器用自來水和洗滌劑洗滌,并用自來水徹底沖洗后用質量分數為10%的硝酸(或鹽酸)浸泡8h以上,然后依次用自來水和純水洗凈。

  2. 容器滅菌:可采用干熱或高壓蒸汽滅菌兩種。干熱滅菌要求160℃下維持2h;高壓蒸汽滅菌要求121℃下維持15min,高壓蒸汽滅菌后的容器如不立即使用,應置于60℃烘箱內將瓶內冷凝水烘干。滅菌后的容器應在2周內使用。

三、采樣要求

  1. 無菌操作。

  2. 不應用水樣蕩洗已滅菌的采樣瓶或采樣袋 

  3. 避免手指和其他物品對瓶口或袋口的玷污。

  4. 自來水水樣:先將水龍頭用火焰燒灼3min滅菌再開放水龍頭使水流5min(經常用水的水龍頭放水1-3min)后,采集水樣。

  5. 水源水水樣:選有代表性的地點及可疑地方,一般距水面下10-15cm采集,采樣后在水中蓋好蓋子,再從水中取出。

  6. 從速送檢,在0~4℃下保存,水樣從采集到檢驗不應超過8h。

PART.3.1

項目測定:菌落總數





一、概念

  1. 菌落:指細菌在固體培養基上發育而形成的能被肉眼所識別的生長物,它是由數以萬計的相同細菌聚集而成的,故又有細菌集落之稱。

  2. 菌落總數:在一定條件下,經一定時間培養后所得1mL水樣中微生物菌落個數。

二、意義

  1. 水中菌落總數可作為評價水質清潔程度和考核凈化效果的指標。

  2. 菌落總數增多說明水體已被污染,但不能說明污染來源,也不能說明該水體傳播傳染病的風險程度。因此,必須結合總大腸菌群來判斷水質污染的來源和安全程度。

三、測定方法——平皿計數法 

  1. 原理:1mL水樣在營養瓊脂培養基上、在有氧條件下36℃±1℃培養48h后,所得1mL水樣中的菌落總數的方法。

  2. 營養瓊脂培養基

    成分:蛋白胨10g;牛肉膏3g;氯化鈉5g;瓊脂10~20g;純水1000mL

    制法:將上述成分混合后,加熱溶解,調整pH為7.4~7.6,分裝于玻璃容器中,經121℃高壓蒸汽滅菌20min,0~4℃冷藏保存。

  3. 實驗步驟

    生活飲用水

    以無菌操作方法用無菌吸管或移液器吸取1mL充分混勻的水樣,注入無菌平皿中,傾注約15mL已融化并冷卻到45℃左右的營養瓊脂培養基,并立即旋搖平皿,使水樣與培養基充分混勻,每次檢驗時應做一平行接種,同時另用一個平皿只傾注營養瓊脂培養基作為空白對照。

    待冷卻凝固后,翻轉平皿,使底面向上,置于36℃±1℃培養箱內培養48h±2h,進行菌落計數,即為1mL水樣中的菌落總數。

     

    水源水

    以無菌操作方法用無菌吸管或移液器吸取1mL充分混勻的水樣,注入盛有9mL無菌生理鹽水的試管中,混勻成1:10稀釋液

    用無菌吸管或移液器吸取1:10的稀釋液1mL注入盛有9mL無菌生理鹽水的試管中,混勻成1:100稀釋液;

    按同法依次稀釋成1:1000、1:10000等稀釋度的液體備用。每稀釋一個稀釋度,應更換一次1mL無菌吸管或吸頭。

    用無菌吸管或移液器吸取2個~3個適宜稀釋度的水樣1mL,分別注入無菌平皿內。以下操作同生活飲用水的檢驗步驟。


  4. 實驗數據處理

    結果報告:可用眼睛直接觀察,必要時用放大鏡檢查,以防遺漏。

     

    同一稀釋度,若其中一個平皿有較大片狀菌落生長時,則不宜采用,而應以無片狀菌落生長的平皿作為該稀釋度的平均菌落數;若片狀菌落不到平皿的一半,而其余一半菌落數分布又很均勻,則可將此半皿計數后×2以代表全皿菌落數。然后再求得該稀釋度的平均菌落數。

    不同稀釋度的選擇及報告方法,見下表。

     





 

 

四、測定方法——酶底物法

  1. 原理:

    利用復合酶技術,在培養基中加入多種獨特的酶底物,每一種酶底物都針對不同的細菌酶設計,且包含最常見的介水傳播的細菌,所有的酶底物在被分解時均產生相同的信號。水樣檢測過程中,水樣中存在的細菌分解一種或者多種酶底物,之后產生一個相同的信號,在檢測菌落總數時,這個信號即為在波長366 nm紫外燈下所產生的熒光。使用基于復合酶底物技術(Multiple Enzyme Technology)的培養基,其中酶底物被微生物的酶水解﹐在36℃士1℃下培養48 h后能夠最大限度地釋放4-甲基傘形酮,4-甲基傘形酮在366 nm紫外燈照射下發出藍色熒光,對呈現藍色熒光的培養盤孔槽計數并查閱MPN表,可以確定原始水樣中最可能的菌落總數。

    本方法未稀釋水樣的檢測范圍<738 MPN/mL。

     

  2. 復合酶底物培養基

     

    成分:

    a) 葡萄糖                 1.25 g

    b)無水硫酸鎂              0.2 g

    c) 蛋白胨                 5.0 g

    d) 酵母提取物              3.5 g

    e) 4-甲基傘形酮磷酸酯         0.037 5 g

    f)4-甲基傘形酮-β-D-葡萄糖苷    0.03 g

    g)純水                 l 000 mL

     

    制法:將上述成分溶解于純水中,調整pH為6.7~7.3,經0.22 um濾膜過濾除菌。制備好的培養基于2℃~8℃條件下保存備用。

     

  3. 實驗步驟

    水樣稀釋:
    檢測所需水樣為l mL。若水樣污染嚴重,可對水樣進行稀釋。以無菌操作方法用無菌吸管或移液器吸取1 mL充分混勻的水樣,注入盛有9 mL無菌生理鹽水的試管中,充分振蕩混勻后取1 mL進行檢測,必要時可加大稀釋度,以10倍逐級稀釋。

    接種培養:
    向一無菌試管中加入9 ml制備好的液體培養基;如選用符合要求的成品培養基,則向裝有0.l g培養基的試管中加入9 mL無菌生理鹽水。取1 mL水樣加入上述試管中,渦旋振蕩混勻。
    將混勻后的水樣倒入培養盤中心位置,將培養盤蓋好,放置在水平桌面上﹐緊貼桌面順時針輕柔晃動培養盤,將待測水樣分配到培養盤的所有孔槽中。
    將培養盤90°~120°豎起,使多余的水樣由盤內海綿條吸收,將培養盤緩慢翻轉過來,倒置放于36 ℃士1℃培養箱中,培養48 h?莎B放培養,不宜超過10層。

     

  4. 實驗數據處理

    結果計數
    將培養后的培養盤取出,倒置于暗處或紫外燈箱內,在6 W 366 nm紫外燈下約13 cm處觀察﹐記錄產生藍色熒光的孔數。如未放置在紫外燈箱內,觀察時需佩戴防紫外線的護目鏡。培養盤中的84個孔,無論熒光強弱,只要呈現藍色熒光即為陽性,但海綿條的熒光不計入結果。

     

    結果報告
    根據顯藍色熒光的孔數,對照表⒉查出孔數對應的每毫升樣品中的菌落總數的MPN值。如果樣品進行了稀釋,讀取的結果應乘以稀釋倍數并報告之,結果以MPN/mL表示。如果所有孔均未顯熒光,則可報告為菌落總數未檢出。

     


     

    不同稀釋度的選擇及報告方法
    選擇菌落總數在<738 MPN/mL.范圍內的稀釋度﹐如果只有一個稀釋度的結果符合此范圍,則將結果乘以稀釋倍數報告結果。

    若有兩個或兩個以上稀釋度的結果均落在<738 MPN/mL,范圍內,則選擇稀釋度最小的結果乘以稀釋倍數報告結果。

    若所有稀釋度的培養盤上均無藍色熒光,則以未檢出報告結果。

 

五、指標限值

菌落總數 :100MPN/mL或CFU/mL,(小型集中式供水和分散供水因水源與凈水技術受限時,菌落總數指標限值按500MPN/mL或CFU/mL執行)。

編輯:songjiajie2010

 
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關鍵詞: 生活飲用水
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